Influência da época de coleta de explantes para o estabelecimento in vitro de dois cultivares de mirtilo (Vaccinium sp.)

Abstract

O mirtileiro é originário do Hemisfério Norte, onde o número de horas com temperaturas ≤7,2°C exigidas para o desenvolvimento deste são naturalmente atingidas. No Brasil, a introdução de variedades com menor exigência em horas-frio viabilizou o cultivo do fruto nas regiões sul e sudeste. A estaquia é a principal técnica de propagação da cultura do mirtilo. Entretanto, a dificuldade de enraizamento e a baixa taxa de sobrevivência têm limitado a aplicação deste método. Assim, a propagação in vitro surge como alternativa para a produção de mudas. Apesar de promissora, existem diversas lacunas de pesquisas atreladas ao cultivo in vitro, as quais estão incluídas as épocas de coleta dos explantes. Além da época, existe também grande variação de resposta entre os genótipos. Visando contribuir para o aperfeiçoamento da micropropagação do mirtileiro, este trabalho objetiva identificar a época de coleta dos explantes mais adequada, bem como verificar a adaptabilidade ao cultivo in vitro dos cultivares de mirtilo Clímax e Bluegem. O experimento foi desenvolvido junto ao Laboratório de Propagação Vegetal do IFRS Campus Ibirubá e os explantes coletados no pomar de mirtilos da mesma instituição em duas épocas de coleta (primavera e verão). O delineamento experimental foi inteiramente casualizado (DIC), em esquema fatorial 2x2 (2 cultivares x 2 épocas), com 15 repetições. Para ambas as épocas, o meio basal utilizado na fase de estabelecimento foi o WPM (Woody Plant Media, 1980) acrescido de 6 g.L-1 de ágar, 1mg.L-1 de 6-Benzilaminopurina e sacarose (100 mg.L-1

), com pH do meio ajustado a 5,0. Os explantes contendo cerca de 1,5 cm de comprimento foram desinfetados e introduzidos nos tubos de ensaio contendo o meio WPM que foram lacrados e, posteriormente transferidos para a sala de crescimento com fotoperíodo de 16 horas e temperatura de 25oC± 2 oC. Após 60 dias do início da fase de estabelecimento, foram avaliadas a taxa de contaminação, taxa de oxidação, número de brotos e número de folhas. Os dados tabulados foram submetidos à análise de variância e ao teste T, a 5% de probabilidade de erro. Para o cultivar Bluegem obteve-se maiores taxas de contaminação quando os explantes foram coletados no verão. Para o cultivar Clímax, por outro lado, houve menor contaminação dos explantes quando coletados no verão. O cultivar Clímax apresentou maiores taxas de oxidação independente da época e não emitiu brotações quando os explantes foram coletados no verão. Para o número de folhas, a melhor época de coleta dos explantes ocorreu na primavera em ambos os cultivares testados.

The blueberry plant originates from the Northern Hemisphere, where the number of hours with temperatures at or below 7.2°C required for its development is naturally achieved. In Brazil, the introduction of varieties with lower chilling hour requirements has made it possible to cultivate the fruit in the southern and southeastern regions. Cutting is the main propagation technique used for blueberry cultivation. However, the difficulty of rooting and the low survival rate have limited the application of this method. Therefore, in vitro propagation emerges as an alternative for seedling production. Although promising, there are several research gaps related to in vitro cultivation, including the appropriate timing for explant collection. In addition to the season of explant collection, genotype response varies considerably. This study aims to contribute to the refinement of blueberry micropropagation by identifying the optimal explant collection period and assessing the in vitro adaptability of the Climax and Bluegem cultivars. The experiment was conducted at the Plant Propagation Laboratory of IFRS – Ibirubá Campus, and the explants were collected from the institution's blueberry orchard during two different seasons (spring and summer). The experimental design followed a completely randomized design (CRD) in a 2x2 factorial scheme (2 cultivars × 2 seasons), with 15 replicates. For both seasons, the basal medium used during the establishment phase was WPM (Woody Plant Medium, 1980), supplemented with 6 g·L−1 of agar, 1 mg·L−1 of 6-benzylaminopurine, and sucrose (100 mg·L−1), with the medium pH adjusted to 5.0. Explants approximately 1.5 cm in length were disinfected and placed into test tubes containing the WPM medium, which were sealed and subsequently transferred to a growth room with a 16-hour photoperiod and a temperature of 25 ± 2°C. After 60 days from the beginning of the establishment phase, contamination rate, oxidation rate, number of shoots, and number of leaves were evaluated. The tabulated data were subjected to analysis of variance and Student’s t-test at a 5% significance level. For the Bluegem cultivar, higher contamination rates were observed when explants were collected in the summer. The Climax cultivar, on the other hand, showed lower contamination when explants were collected during the same season. Climax exhibited higher oxidation rates regardless of the collection period and did not produce shoots when explants were collected in the summer. As for the number of leaves, the best explant collection season was spring for both cultivars tested.